Determinación del contenido de compuestos polifenólicos en hojas de Acacia polyphylla en diferentes estados fenológicos

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.17268/agrosci.2025.005%20%20

Palabras clave:

compuestos polifenólicos, taninos, Acacia polyphylla, estados fenológicos

Resumen

Este trabajo de investigación permitió conocer la cantidad y naturaleza de compuestos polifenólicos, presentes en cada uno de los estados fenológicos de la Acacia polyphylla, mediante la extracción y caracterización en muestras de hojas frescas y deshidratadas (55 °C).  La extracción se realizó con una solución acidificada de éter de petróleo y una solución acuosa de etanol; para la caracterización y cuantificación se aplicaron las técnicas descritas para el Análisis de Taninos (Makkar; 2000). En las hojas de Acacia polyphylla, los valores más altos de taninos totales (5,297%), polifenoles totales (5,386 %), fenoles simples (0,0896%) y taninos que precipitan las proteínas (0,319%) se obtuvieron en el crecimiento activo de la planta, y taninos condensables fue similar en todos los estados; mientras que los niveles más bajos fueron medidos en fructificación para fenoles simples (0,045%) polifenoles totales (2,348%), taninos totales (2,303%) y taninos que precipitan proteínas (0,128%).  El tratamiento térmico realizado al deshidratar a 55 °C redujo la cantidad de compuestos fenoles simples y taninos que precipitan proteínas.

Citas

Araujo Filho, J. A. de, Carvalho, F. C. de, & Silva, N. L. da. (2002). Fenología y valor nutritivo de follajes de algunas especies forrajeras de la Caatinga. Agroforestería en las Américas, 9, 33-37.

Brooks, R., & Owen-Smith, N. (1994). Plant defences against mammalian herbivores: ¿are juvenile Acacia more heavily defended than mature trees? Bothalia, 24(2), 211-215. https://doi.org/10.4102/abc.v24i2.773

Calderón Salas, M. (2006). Extracción y caracterización de compuestos polifenólicos, presentes en Acacia polyphylla y Mimosa arenosa, especies leguminosas nativas del semiárido Estado Lara. [Trabajo Especial presentado ante el Departamento de Ingeniería Química de la Universidad Nacional Experimental Politécnica “Antonio José de Sucre” Vice-Rectorado de Barquisimeto como requisito parcial para optar al Título de Ingeniero Químico]. 97 p.

Cesarino, E. C., dos S. Gomes, J. O., Lessa, E. V., de Carvalho, A. R., Vieira, I. J. C., de Carvalho, M. G., da Silva, T. M. S., (...), & Ferreira, R. O. (2020). Composição Química e Atividade Antioxidante de Acacia polyphylla (Fabaceae). Rev. Virtual Quim., 12(2), 424-432. http://dx.doi.org/10.21577/1984-6835.20200034

Chavan, U., Shahidi, F., & Naczk, M. (2001). Extraction of condensed tannins from beach pea (Lathyrus maritimus L.) as affected by different solvents. Food Chemistry, 75(4), 509-512. https://doi.org/10.1016/S0308-8146(01)00234-5

Espejo-Díaz, M.A., and Nouel-Borges, G. E. (2020). Evaluation of Acacia macracantha pods in balanced ration for growing rabbits. Agronomía Costarricense, 44(1), 93-104. http://dx.doi.org/10.15517/rac.v44i1.40005

Espejo-Díaz, M.A., & Nouel-Borges, G. E. (2014). Secondary compounds attenuation in Acacia macracantha leaves and its effect on intake, digestibility, plasma and productive variables by incorporating them in rations for rabbits. Animal Production Science, 55(2), 237-240. http://dx.doi.org/10.1071/AN14142

Gowda, J. H., & Palo, R.T. (2003). Age-related changes in defensive traits of Acacia tortilis. Hayne, 41(3), 218-223. https://doi.org/10.1046/j.1365-2028.2003.00434.x

Joint FAO/IAEA. (2000). Quantification of tannins in tree foliage. A laboratory manual for the FAO/IAEA coordinated research project on 'Use of nuclear and related techniques to develop simple tannin assays for predicting and improving the safety and efficiency of feeding ruminants on tanniniferous tree foliage' (INIS-XA-553). Division of Nuclear Techniques in Food and Agriculture, Vienna (Austria) International Atomic Energy Agency (IAEA)

Makkar, H. P. S., Bluemmel, M., Borowy, N. K., & Becker, K. (1993). Gravimetric determination of tannins and their correlations with chemical and protein precipitation methods. Journal of Science Food Agriculture, 61, 161-165. https://doi.org/10.1002/jsfa.2740610205

Makkar, H. P. S, Dawra, R. K., & Singh, B. (1988). Determination of both tannin and protein in a tannin-protein complex. Journal Agriculture Food Chemistry, 36, 523-525.

Martínez, B., Rincón, F., & Ibáñez, M. (2000). Optimization of Tannin Extraction from Infant Foods. J. Agric. Food Chem., 48(6), 2097-2100. https://doi.org/10.1021/jf991267o

Nouel-Borges, G. (2015). Leguminosas Tropicales del Semiárido y Alternativas de Uso en Alimentación de Herbívoros. Saarbrücken, Germany. Editorial Académica Española, 124 p.

Ortiz, J. N., Miranda, H., & Peroza, D. (2015). Uniformidad y pérdidas por evaporación y arrastre en riego por aspersión en Tarabana, estado Lara. Revista Unellez de Ciencia y Tecnología, 33, 53-61.

Parissi, Z. M., Karameri E., Abraham E. M., Kyriazopoulos A. P., and Petridis, A. (2014). Impact of maturation on extractable polyphenols in leguminous fodder species. In: Baumont R. et al. Forage resources and ecosystem services provided by Mountain and Mediterranean grasslands and rangelands. Zaragoza: CIHEAM/INRA/FAO/VetAgro Sup Clermont-Ferrand / Montpellier SupAgro, Options Méditerranéennes: Série A. Séminaires Méditerranéens, 109, 219-222.

Pirie, N. W. (2008). Leaf Protein and its by-products in human and animal nutrition. 2nd revised edition Cambridge University Press, Cambridge CB2 8RU, UK, 224 p.

Porter, L. J., Hrstich, L. N., & Chan, B. G. (1986). The conversion of procyanidins and prodelphinidins to cyanidin and delphinidin (online). Phytochemistry, 25, 223-230.

Rico, M. (2001). El Género Acacia (Leguminosae, Mimosoiedeae) en el Estado de Oaxaca, México. Anales del Jardín Botánico de Madrid, 58(2), 251-302. https://doi.org/10.3989/ajbm.2000.v58.i2.157

SPSS Inc. Released (2009). PASW Statistics for Windows, Version 18.0. Chicago: SPSS Inc.

Statistix For Windows. (2003). Version 8.0. Analytical Software.

Swati Gautam, S., Swapandeep Singh, C., Saroj, A., & Satwinder Kaur, S. (2021). Toxic effects of purified phenolic compounds from Acacia nilotica against common cutworm. Toxicon, 203, 22-29 https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2021.09.017.

Torregrossa, A.-M., & Dearing, M.D. (2009). Nutritional toxicology of mammals: regulated intake of plant secondary compounds. Functional Ecology, 23, 48–56. https://doi.org/10.1111/j.1365-2435.2008.01523.x

Ung, A. T., & Asmara, A. P. (2023). Bioactive Phytochemicals of Acacia saligna. Molecules, 28, 4396. https://doi.org/10.3390/molecules28114396

Yáñez-Ruiz D. R., & Belanche, A. (2020). Plant secondary compounds: beneficial roles in sustainable ruminant nutrition and productivity. Chapter. Burleigh Dodds Science Publishing Limited. All rights reserved. http://dx.doi.org/10.19103/AS.2020.0067.25

Wink, M. (2013). Evolution of secondary metabolites in legumes (Fabaceae). South African Journal of Botany, 89, 164–175. http://dx.doi.org/10.1016/j.sajb.2013.06.006

Descargas

Publicado

07-03-2025

Cómo citar

Alarcón, P., Giménez , L., Nouel-Borges, G., & Castillo, G. (2025). Determinación del contenido de compuestos polifenólicos en hojas de Acacia polyphylla en diferentes estados fenológicos. AgroScience Research, 3(1), 45–51. https://doi.org/10.17268/agrosci.2025.005

Número

Sección

Artículos